R语言有丰富的图表和Biocductor上面的各种生信分析R包。
下面以dplyr为例,学习R包
通过options()$repos
检验
为了保证可以自定义CRAN和Bioconductor的下载镜像,只需要运行这两行代码即可:
options函数就是设置R运行过程中的一些选项设置
options("repos" = c(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/")) #对应清华源
options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/") #对应中科大源
当然可以换成其他地区的镜像
BU这种方法还是有问题,下次再打开Rstudio,下载Bioconductor还是会回到官方镜像,可以查询options()$BioC_mirror
,如果依然是自己设置的国内镜像,就不用管了;如果发现需要再重新运行一遍代码进行设置,那么使用下面的高级模式
### 高级模式
使用R的配置文件.Rprofile
1)首先用file.edit()
来编辑文件:file.edit('~/.Rprofile')
2) 然后在左上添加两行options
代码:
options("repos" = c(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/")) #对应清华源
options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/") #对应中科大源
3)保存➡️重启Rstudio,再运行一下:
options()$repos
和
options()$BioC_mirror
就发现已经配置好了,就很方便地省了手动运行的步骤
【确保联网再操作!!!】
R包安装命令是install.packages(“包”)
或者BiocManager::install(“包”)
。取决于要安装的包存在于CRAN网站还是Biocductor,存在于哪里➡️可以谷歌搜到。
library和require,两个函数均可。
使用一个包,是需要先安装再加载,才能使用包里的函数。
options("repos" = c(CRAN="https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/CRAN/"))
options(BioC_mirror="https://mirrors.ustc.edu.cn/bioc/")
install.packages("dplyr")
library(dplyr)
示例数据直接使用内置数据集iris的简化版: test <- iris[c(1:2,51:52,101:102),]
🌟🌟🌟注意,井号开头的是代码运行记录。可以和自己的运行结果做对比
mutate(test, new = Sepal.Length * Sepal.Width)
select(test,1)
select(test,Sepal.Length)
select(test,c(1,5))
select(test, Petal.Length, Petal.Width)
vars <- c("Petal.Length", "Petal.Width")
select(test, one_of(vars))
filter(test, Species == "setosa")
filter(test, Species == "setosa"&Sepal.Length > 5 )
filter(test, Species %in% c("setosa","versicolor"))
#### 4.arrange(),按某1列或某几列对整个表格进行排序
arrange(test, Sepal.Length)#默认从小到大排序
arrange(test, desc(Sepal.Length))#用desc从大到小
#### 5.summarise():汇总
对数据进行汇总操作, 结合 group_by 使用实用性强
summarise(test, mean(Sepal.Length), sd(Sepal.Length))# 计算Sepal.Length的平均值和标准差
先按照Species分组,计算每组Sepal.Length的平均值和标准差: group_by(test, Species)
summarise(group_by(test, Species),mean(Sepal.Length), sd(Sepal.Length))
# dplyr两个实用技能
## 1:管道操作 %>% (cmd/ctr + shift + M)
(加载任意一个tidyverse包即可用管道符号)
test %>%
group_by(Species) %>%
summarise(mean(Sepal.Length), sd(Sepal.Length))
## 2:count统计某列的unique值
count(test,Species)
# dplyr处理关系数据
即将2个表进行连接
test1 <- data.frame(x = c('b','e','f','x'),
z = c("A","B","C",'D'))
test1
test2 <- data.frame(x = c('a','b','c','d','e','f'),
y = c(1,2,3,4,5,6))
test2
## 1. 内连inner_join,取交集
inner_join(test1, test2, by = "x")
left_join(test1, test2, by = 'x')
left_join(test2, test1, by = 'x')
## 3.全连full_join
full_join( test1, test2, by = 'x')
## 4.半连接:返回能够与y表匹配的x表所有记录semi_join
semi_join(x = test1, y = test2, by = 'x')
anti_join(x = test2, y = test1, by = 'x')
在相当于base包里的cbind()函数和rbind()函数;注意,bind_rows()函数需要两个表格列数相同,而bind_cols()函数则需要两个数据框有相同的行数
test1 <- data.frame(x = c(1,2,3,4), y = c(10,20,30,40))
test1
test2 <- data.frame(x = c(5,6), y = c(50,60))
test2
test3 <- data.frame(z = c(100,200,300,400))
test3
bind_rows(test1, test2)
bind_cols(test1, test3)
原创声明:本文系作者授权腾讯云开发者社区发表,未经许可,不得转载。
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